
تعداد نشریات | 21 |
تعداد شمارهها | 314 |
تعداد مقالات | 3,321 |
تعداد مشاهده مقاله | 3,546,611 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 2,591,250 |
تاثیر سطوح مختلف بیوچار حاصل از تفاله موم زنبور عسل بر خصوصیات رشدی و بیوشیمیایی گیاه همیشه بهار (.Calendula officinalis L) تحت تنش شوری و روی | ||
تنشهای محیطی در علوم زراعی | ||
مقاله 2، دوره 17، شماره 4، دی 1403، صفحه 667-683 اصل مقاله (1.23 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22077/escs.2024.6360.2211 | ||
نویسندگان | ||
فاطمه هدایتی1؛ نسیبه پورقاسمیان* 2، 3؛ مهدی نقی زاده4؛ روح الله مرادی5 | ||
1دانشآموخته کارشناسیارشد گیاهان دارویی، گروه تولیدات گیاهی، دانشکده کشاورزی بردسیر، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان | ||
2دانشیار، گروه تولیدات گیاهی، دانشکده کشاورزی بردسیر، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان | ||
3گروه پژوهشی کشت و فرآوری زعفران و گل محمدی، دانشگاه شهید باهنر کرمان | ||
4استادیار، گروه تولیدات گیاهی، دانشکده کشاورزی بردسیر، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان | ||
5دانشیار، گروه تولیدات گیاهی، دانشگاه تربت حیدریه، ایران | ||
چکیده | ||
بهمنظور بررسی اثر کاربرد بیوچار حاصل از تفاله موم زنبورعسل در شرایط تنش شوری و روی در گیاه دارویی همیشهبهار، آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه فاکتور شامل تنش شوری در دو سطح (شاهد، آب شهر و 6 دسیزیمنس بر متر)، عنصر روی در 4 سطح (شاهد، 300، 1500 و 3000 میلیگرم بر کیلوگرم خاک) و بیوچار حاصل از تفاله موم زنبورعسل در سه سطح (شاهد، 1.5 و 3 درصد وزنی) در سه تکرار اجرا شد. نتایج آزمایش نشان داد که اعمال تنش شوری و روی منجر به کاهش معنیدار وزن خشک بوته و گل گیاه همیشهبهار در مقایسه با شرایط عدم تنش گردید .بطوریکه بیشترین میزان بیوماس و وزن خشک گل در تیمار عدم تنش شوری (شاهد) به همراه تنش روی با غلظت 300 پیپیام و بیوچار 1.5 درصد وزنی به ترتیب میزان 9.83 و 1.59 گرم در بوته مشاهده شد و کمترین میزان آن متعلق به تیمار شوری 6 دسیزیمنس بر متر و تنش روی با غلظت 1500 پیپیام و عدم مصرف بیوچار به ترتیب به میزان 1.8 و 0.27 گرم در بوته بود همچنین میزان رنگیزههای فتوسنتزی و متابولیتهای ثانویه نظیر ترکیبات فنلی، فلاونوئیدها و آنتوسیانینها در مقایسه با شرایط عدم تنش کاهش ولی میزان فعالیت آنزیمهای کاتالاز و آسکوربات پراکسیداز تحت تنش شوری و روی در مقایسه با تیمارهای شاهد افزایش یافتند. استفاده از بیوچار در سطح 1.5 درصد، در شرایط تنش شوری و روی سبب افزایش صفات رویشی، بهبود رنگیزههای فتوسنتزی، متابولیتهای ثانویه و آنزیمهای آنتی-اکسیدانی، در مقایسه با شرایط عدم مصرف بیوچار شد. | ||
کلیدواژهها | ||
اسکوربات پراکسیداز؛ رنگیزه های فتوسنتزی؛ کاتالاز؛ گیاه دارویی؛ متابولیت های ثانویه | ||
مراجع | ||
Abeer, H., Abdallah, E.F., Alqarawi, A.A., Egamberdieva, D., 2015. Induction of salt stresstolerance in cowpea (Vigna unguiculata L. Walp.) by arbuscular mycorrhizal fungi. Legume Research. 38, 579-88. https://doi.org/10.18805/lr.v38i5.5933 Ahmad, P., Azooz, M.M., Prasad, M.N.V, eds., 2012. Ecophysiology and responses of plants under salt stress. Journal of Springer Science a Business Media. New York, pp. 443-472 Balashouri, P., 1995. Effect of zinc on germination, growth and pigment content and phytomass of Vigna radiata and Sorghum bicolor. Journal of Ecobiology. 7, 109-114. Barghi, A., Gholipouri, A., 2020. Effects of jasmonic acid and 24-epi brassinolid on quantitative and qualitative yield of Nigella sativa L. under salinity stress condition. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research. 36, 839-850. [In Persian with English Summary] Buss, W., Kammann, C., Koyro, H., 2012. Biochar reduces copper toxicity in Chenopodium quinoa willd. in a sandy soil. Journal of Environmental Quality. 41, 1157-1165. https://doi.org/10.2134/jeq2011.0022 Bradford, M.M., 1979. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantites of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72, 248-254. Brown, P.H., Cakmak I., Zhang, Q., 1993. Form and function of zinc in plants. 93-106 In: Robson, A.D. (ed.), Zinc in soils and plants Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, the Netherland. Candan, N., Tarhan, L., 2003. The correlation between antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation levels in Mentha pulegium organs grown in Ca2+, Mg2+, Cu2+, Zn2+ and Mn2+ stress conditions. Plant Science. 165, 769-776. https://doi.org/10.1016/s0168-9452(03)00269-3 Chakraborthy, G. S., 2010. Phytochemical screening of Calendula officinalislinn leaf extract by T L C. International Journal of Research in Ayurveda and Pharmacy. 1, 131-134 Dehghan Neiri., 2014. Investigating the effects of salinity stress and salicylic acid on some morphological, physiological and biochemical characteristics of marigold (Calendula officinalis L.). Master's thesis in the field of agriculture, horticultural sciences, Shahid Bahonar University, Kerman. Page 116. [In Persian with English Summary] FAO., 2022. Global Symposium on Salt-Affected Soils: Outcome document. Rome. https://doi.org/10.4060/cb9929en Fabriki-Ourang, S., Davoodnia, B., 2018. Changes in growth characteristics and secondary metabolites in Thymus vulgaris L. under moderate salinity and drought shocks. 6, 27-40. [In Persian with English Summary]. Gazim, Z., Rezende, C., Fraga, S., Dias, Filho, B., Nakamura, C., Cortez, D., 2008. Analysis of the essential oils from Calendula officinalis growing Brazil using three different extraction procedures. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. 44, 391-395. Gholinejad, R., Sirousmehr, A., Fakheri, B., 2014. Effect of drought stress and organic fertilizer on activity of some antioxidant enzymes, photosynthetic pigments, proline and yield of Borage (Borago officinalis). Journal of horticulture science. 3 (28), 338-346. Hormozinejad, E., Zolfaghari, M., Mahmoodi Sourestani, M., Enayati Zamir, N., 2018. Effects of plant growth promoting rhizobactria and chemical fertilizer on growth, yield, flowering, physiological properties, and total phenolic content of Calendula officinalis L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research. 34, 684-696. [In Persian with English Summary] Housley, C., Kachenco, A.G., Singh. B., 2015. Effects of Eucalyptus Saligna biochar-amended media on the growth of Acmenasmithii, Viola var. hybrida, and Viola×wittrockiana. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology. 90, 187-194. Kanayama, Y., Kochetov, A. 2016. Abiotic stress biology in horticultural plants; horticultural research. 15, 213-220. Khalid, K.A., Teixeira da Silva, J., 2012. Biology of calendula officinalis Linn: focus on pharmacology, biological activities and agronomic practices. Medicinal and Aromatic Plant Science and Biotechnology. 6, 12-27. Khoo, H-E., Prasad, K.N., Kong, K-W., Jiang, Y., Ismail, A., 2011. Carotenoids and their isomers: color pigments in fruits and vegetables. Molecules. 16, 1710- 1738. https://doi.org/10.3390/molecules16021710 Lehmann, J., 2007. A Handful of carbon. Nature, 447, 143-144. Lichtenthaler, H.K., 1987. Chlorophylls and carotenoids: Pigments of photosynthetic biomembranes. Methods in Enzymology. 148, 350-382. Liu, J., Li J., Su X., Xia Z., 2014, Grafting improves drought tolerance by regulating antioxidant enzyme activities and stress responsive gene expression in tobacco. Environmental and Experimental Botany. 107, 173-179. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2014.06.012 Major, J., Lehmann, J., Rondon, M., Goodale, C., 2010. Fate of soil‐ applied black carbon: downward migration, leaching and soil respiration. Global Change Biology. 16, 1366-1379. Mancarella, S., Orsini, F., Van Oosten, M.J., Sanoubar, R., Stanghellini, C., Kondo, S., Gianquinto, G., Maggio, A., 2016. Leaf sodium accumulation facilitates salt stress adaptation and preserves photosystem functionality in salt stressed Ocimumbasilicum. Environmental and Experimental Botany. 130, 162-173. Mia, S., van, G., roenigen, J., Van, de, V., oorde, T., Oram, N., Bezemer, T., Mommer,L. Jeffery,S., 2014. Biochar application rate affects biological nitrogen fixation in redclover conditional on potassium availability. Agric. Ecosyst. Environ. 191, 83–91. https://doi.org/10.1016/j.agee.2014.03.011 Mirzaie, M., Lada Moghadam, A.R., Hakimi, L., Danaee, E., 2020. Water stress modifies essential oil yield and composition, glandular trichomes and stomatal features of lemongrass (Cymbopogon citratus L.) inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi. Journal of Agricultural Science and Technology. 22,1575-1585. Moradi, R., Pourghasemian, N., Naghizade, M., 2019. Effect of beeswax waste biochar on growth, physiology and cadmium uptake in saffron. Journal of Cleaner Production. 1251-1261 Nemati, M. R., Simard, F., Fortin, J. P., Beaudoin, J., 2015. Potential use of biochar in growing media. Vadose Zone Journal. 14, 44-61. https://doi.org/10.2136/vzj2014.06.0074 Pourghasemian, N., Moradi, R., 2017. Potential of using beeswax waste as the substrate for borage (Borago officinalis) planting in different irrigation regimes. Journal of Plant Process and Function. 7, 42-65. [In Persian with English Summary]. Pourghasemian, N., Moradi, R., Naghizade, M. 2018. Effect of planting time and place on quality of some brompton stock varieties for cultivation in Bardsir, Kerman. Journal of Agricultural Crops Production. 20, 679-692. In Persian. https://doi.org/10.22059/jci.2018.246733.1879 Preethi, K., Chandran, R. K., 2008. Effect of Calendula officinalis flower extract on acute phase proteins, antioxidant defense mechanism and granuloma formation during thermal burns. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition, 43. 58-64. https://doi.org/10.3164/jcbn.2008043 Rai, V., Vaypayee P., Singh S.N., Mehrotra S., 2004. Effect of chromium accumulation on photosynthetic pigments, oxidative stress defense system, nitrate reduction, proline level and eugenol content of Ocimum tenuiflorum. Plant Science. 167, 1159-1164. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2004.06.016 Reichman, S. M., Asher, C.J., Mulligan D. R., Menzies, N.W., 2001. Seedling responses of three Australian tree species to toxic concentrations of zinc in solution culture. Plant Soil. 235, 151–158. https://doi.org/10.1023/A:10119034303852829 Shahbaz, A. K., Lewinska, K., Iqbal, J., Ali, Q., Rahman, M., Iqbal, M., Abbas, F., Tauqeer, H. Ramzani, M., 2018. Improvement in productivity, nutritional quality, and antioxidative defense mechanisms of Sunflower (Helianthus annuus L.) and Maize (Zea mays L.) in nickel contaminated soil amended with different biochar and zeolite ratios. Journal of Environmental Management. 218, 256-270. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2018.04.046 Shanker, K., Venkateswarlu, B., 2011. Abiotic Stress in Plants – Mechanisms and Adaptations. Published by Intec JanezaTrdine 9, 51000 Rijeka, Croatia. Sukaron, N., Utomo, W., Kusuma, Z., Nugroho, Wh., maize (Zea mays L.). 2011. Soil fertility status, nutrient uptake, and yield following biochar and cattle manure application on sandy soils of Lombok, Indonesia. Journal of Tropical Agriculture 49, 47-52. Tang, J., Zhu, W., Kookana, R., Katayama, A., 2013. Characteristics of biochar and its application in remediation of contaminated soil. Journal of Bioscience and Bioengineering. 116, 653-659. https://doi.org/10.1016/j.jbiosc.2013.05.035 Wagner, G.J., 1979. Content and vacuole/extravacuole distribution of neutral sugars, free amino acids, andanthocyanin in protoplasts. Plant Physiology. 64, 88-93. https://doi.org/10.1104/pp.64.1.88 Zhang, L., Sun, X., Tian, Y., and Gong, X., 2014. Biochar and humic acid amendments improve the quality of composted green waste as a growth medium for the ornamental plant Calatheainsignis. Scientia Horticulturae. 176, 70-78. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2014.06.021
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 764 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 422 |